MICROSCOPIAS DE BARRIDO POR SONDAS: METODOS Y APLICACIONES
Fechas y horarios
El curso teórico-práctico se dictará entre el
3 al 17 de octubre del corriente año en el CMA, con una carga de 9
horas diarias. Se tomará un examen final.
Requisitos y cupo
Doctorados y doctorandos con proyectos en los cuales las técnicas
de microscopía de barrido por sondas resulten una herramienta importante
para el desarrollo del mismo. Graduados en Cs. Químicas, en Cs. Físicas,
Cs Biológicas, Medicina, Farmacia, Bioquímica y Biotecnología.
Cupo para los Trabajos Prácticos:10 vacantes.
Arancel: $300 (para externos a la UBA)
Informes e inscripción
Para realizar los Trabajos Prácticos enviar a cma@df.uba.ar
el C.V. y un resumen del proyecto de investigación, o presentarlo personalmente
hasta el 20 de septiembre, en el horario de 10:00 a 16:00 hs. Además,
cuando se habilite la inscripción, será obligatorio inscribirse
a través de la página www.inscripciones.fcen.uba.ar.
Información en Word para difundir Word 700 kb
PROGRAMA
Parte
I: Microscopía de Barrido por sondas (SPM)
1-Introducción
·
Microscopía de barrido por
sondas: nacimiento y desarrollo
·
Principios básicos
2- Microscopía de fuerza
atómica (AFM)
- Microscopía de Fuerza
Atómica
- Diseño e instrumentación
Partes de un AFM
Sensores de fuerza
Sistema de detección
Interacciones en AFM
Resolución espacial y temporal
- Modos de operación en AFM
- Técnicas de preparación
de muestra para AFM
- Ventajas y limitaciones en
AFM
- Nueva instrumentación
3- Otros ejemplos de SPM
·
LFM y ChFM
·
MFM
·
FMM
4- Métodos relacionados
·
Microscopía de barrido por
efecto túnel
·
Microscopía óptica
de barrido en campo cercano
·
Microscopía de barrido por
conductancia iónica
·
Manipulación de moléculas
únicas
Parte
II: Aplicaciones
1. Física
·
Medición de interacciones
de largo alcance. Señales magnéticas (MFM) y señales
electrostáticas (EFM)
·
Propiedades eléctricas de
alambre moleculares
2. Química
·
Polímeros
·
Lagmuir-Blodgett films
3. Biofísica
·
Propiedades físicas de las
biomoléculas
·
Propiedades eléctricas
·
Propiedades mecánicas
·
Caracterización structural
de complejos moleculares
·
Proteínas de membrana
·
Interacciones entre proteínas
y ADN
·
Espectroscopía de fuerza
Programas demostrativos:
AFM model
Driven oscillator
Probe simulator
Tutoriales:
Tutorial de operación
Preparación de muestras
Operación bajo líquido
Cantilevers, Calibration Standards,
and Samples
Silicon Metrology Probes
for AFM Imaging
A guide to AFM image artifacts
A practical guide to scanning
probe microscopy
Bibliografía:
Observing structure, function
and assembly of single proteins by AFM
Measuring the Elastic Properties of Thin
Polymer Films with the Atomic Force Microscope
The G protein-coupled receptor
rhodopsin in the native membrane
Rhodopsin dimers in native
disc membranes
The binding mode of the
DNA bisintercalator luzopeptin investigated using atomic force microscopy
New technologies in scanning probe
microscopy for studying molecular interactions in cells
Spontaneous insertion and partitioning
of alkaline phosphatase into model lipid rafts
Temperature Dependence of the
Surface Topography in Dimyristoylphosphatidylcholine/Distearoylphosphatidylcholine
Multibilayers
Structure of Spin-Coated
Lipid Films and Domain Formation in Supported Membranes Formed by Hydration
Structural and Mechanical Properties
of Polyelectrolyte Multilayer Films Studied by AFM
Conformational changes in surface
structures of isolated connexin 26 gap juntions
Force-induced Conformational
Change of Bacteriorhodopsin
Adsorption of Biological Molecules
to a Solid Support for Scanning Probe Microscopy
Structural Changes in Native
Membrane Proteins Monitored at Subnanometer Resolution with the Atomic Force
Microscope: A Review
Controlled unzipping of a bacterial
surface layer with atomic force microscopy
Unfolding Pathways of Individual
Bacteriorhodopsins
Controlled unzipping of a bacterial
surface layer with atomic force microscopy
Olympus Oxide-Sharpened Silicon Nitride
Probe
The coiled-coil of the human Rad50
DNA repair protein contains specific segments of increased flexibility
Visualizing RNA Extrusion and
DNA Wrapping in Transcription Elongation Complexes of Bacterial and Eukaryotic
RNA Polymerases
Accurate length determination
of DNA molecules visualized by atomic force microscopy: evidence for a partial
B- to A-form transition on mica
Visualizing RNA Extrusion and
DNA Wrapping in Transcription Elongation Complexes of Bacterial and Eukaryotic
RNA Polymerases
Nanostructural features of demosponge
biosilica
Protein–protein unbinding
induced by force: single-molecule studies
Atomic force microscopy examination
of tobacco mosaic virus and virion RNA
In-situ Atomic Force Microscopy
Study of B-Amyloid Fibrillization
Atomic Force Microscopy Analysis
of Icosahedral Virus RNA
Atomic force microscopy investigation
of a chlorella virus, PBCV-1
Atomic Force Microscopy Investigation
of Isolated Virions of Murine Leukemia Virus
Atomic force microscopy investigation
of wild-type Moloney murine leukemia virus particles and virus particles
lacking the envelope protein
Atomic Force Microscopy Investigation
of Human Immunodeficiency Virus (HIV) and HIV-Infected Lymphocytes
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